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中华实验和临床感染病杂志(电子版)

中华实验和临床感染病杂志(电子版) ›› 2021, Vol. 15 ›› Issue (01) : 67 -71. doi: 10.3877/cma.j.issn.1674-1358.2021.01.011

所属专题： 文献；

论著

鲍曼不动杆菌生物被膜形成能力与被膜相关基因及耐药性的关系
罗凤华1, 魏剑林2,†()   
  1. 1. 637000　南充市，南充市中心医院嘉陵院区（南充市嘉陵区人民医院）检验科
    2. 637000　南充市，南充市中心医院检验科
  • 收稿日期:2020-02-19 出版日期:2021-02-15
  • 通信作者: 魏剑林

Relationship between the biofilm formation ability of Acinetobacter baumannii and biofilm related genes, drug resistance

Fenghua Luo1, Jianlin Wei2,†()   

  1. 1. Department of Clinical Laboratory, Nanchong Central Hospital Jialing Branch, Nanchong Jialing People’s Hospital, Nanchong 637000, China
    2. Department of Clinical Laboratory, Nanchong Central Hospital, Nanchong 637000, China
  • Received:2020-02-19 Published:2021-02-15
  • Corresponding author: Jianlin Wei
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引用本文：

罗凤华, 魏剑林. 鲍曼不动杆菌生物被膜形成能力与被膜相关基因及耐药性的关系[J/OL]. 中华实验和临床感染病杂志(电子版), 2021, 15(01): 67-71.

Fenghua Luo, Jianlin Wei. Relationship between the biofilm formation ability of Acinetobacter baumannii and biofilm related genes, drug resistance[J/OL]. Chinese Journal of Experimental and Clinical Infectious Diseases(Electronic Edition), 2021, 15(01): 67-71.

目的

探讨临床分离的鲍曼不动杆菌生物被膜形成能力与相关基因及耐药性的关系。

方法

收集南充市中心医院嘉陵院区2018年1月至6月的临床分离鲍曼不动杆菌共40株，采用Vitek-2全自动微生物分析系统测定临床菌株对13种常用抗菌药物的最低抑菌浓度（MIC）；采用结晶紫染色法测定临床菌株生物被膜形成能力；采用PCR法检测生物被膜相关基因abaI、bap、BLP1与BLP2。采用Fisher确切概率法分析不同生物被膜形成能力菌株的耐药情况及基因检出率。

结果

40株临床菌株中多重耐药（MDR）菌株7株（17.5%），泛耐药（XDR）菌株14株（35.0%）。共31株（77.5%）临床菌株形成生物被膜。abaI、bap、BLP1与BLP2基因的检出率分别为85.00%、62.50%、5.0%和17.5%。不同生物被膜形成能力的鲍曼不动杆菌对哌拉西林/他唑巴坦的耐药率差异有统计学意义（P = 0.046）。而生物被膜形成强阳性鲍曼不动杆菌对哌拉西林、头孢他啶、头孢哌酮、头孢哌酮/舒巴坦、亚胺培南、美罗培南、阿米卡星、左氧氟沙星、多西环素、复方磺胺甲恶唑的耐药率均低于弱阳性和阴性菌株，但差异均无统计学意义（P均> 0.05）。携带BLP2基因菌株的生物被膜形成能力差异有统计学意义（P = 0.039），而携带abaI（P = 0.455）、bap（P = 0.058）和BLP1基因（P = 1.000）菌株的生物被膜形成能力差异无统计学意义。

结论

生物被膜可导致鲍曼不动杆菌对抗菌药物的敏感性改变，生物被膜形成能力仅与携带BLP2基因及哌拉西林/他唑巴坦耐药有关。

关键词: 鲍曼不动杆菌, 生物被膜, 基因, 耐药性
Objective

To investigate the relationship between biofilm formation ability of Acinetobacter baumannii (A. baumannii) clinical isolated and biofilm related genes, drug resistance.

Methods

Total of 40 strains of A. baumannii clinical isolates were collected from Nanchong Jialing District People’s Hospital from January to June, 2018. The minimum inhibitory concentration (MIC) of 13 kinds of common antibiotics were determined by Vitek-2 Automatic Microorganism System. The biofilm formation ability was determined by crystal violet staining. The biofilm related genes abaI, bap, BLP1 and BLP2 were detected by PCR. The biofilm related genes and drug resistance of different biofilm formation ability were analyzed by Fisher exact probability method.

Results

Seven (17.5%) multi-drug resistant (MDR) strains and 14 (35.0%) extensively drug resistant (XDR) strains were detected among the 40 clinical isolates. Total of 31 (77.5%) strains exhibitted biofilm formation. The positive ratios of abaI, bap, BLP1 and BLP2 gene were 85.00%, 62.50%, 5% and 17.5%, respectively. The resistance of A. baumannii with different biofilm formation ability to piperacillin/tazobactam was significantly different (P = 0.046). The resistance rates of A. baumannii strains with strong biofilm formation to piperacillin, ceftazidime, cefoperazone, cefoperazone/sulbactam, imipenem, meropenem, amikacin, levofloxacin, doxycline, compound sulfamethoxazole were lower than those of weak positive strains and negative strains, but with no significant differences (all P > 0.05) The biofilm formation ability of isolates with BLP2 gene were statistically different (P = 0.039), but the biofilm formation ability were not significantly different of iaolates with abaI (P = 0.455), bap (P = 0.058) and BLP1 genes (P = 1.000), respectively.

Conclusions

The sensitivity of A. baumannii to antibiotics could be changed by biofilm formation, which was related to biofilm formation and BLP2 gene, piperacillin/tazobactam resistance.

Key words: Acinetobacter baumannii, Biofilm, Gene
表1 引物序列表
基因 引物（5'→3'） 参考文献
abaI GTACAGTCGACGTATTTGTTGAATATTTGGG [9]
CGTACGTCTAGAGTAATGAGTTGTTTTGCGCC
BLP1 CGAAGGTAATCGCAAAAATTG [10]
ATGTAATGGACGAATGTTGCTC
BLP2 CCGGATGTTCCACAAGCTCA [10]
CCGCTTCACTGGTTAATGGT
bap TAGGGAGGGTACCAATGCAG [11]
TCATGATTTGATGCTGCAGCG ATA A
表2 不同生物被膜形成能力的鲍曼不动杆菌对常见抗菌药物的耐药率[例（%）]
抗菌药物 总耐药率（n = 40） 生物被膜形成能力 P值
强阳性（n = 17） 弱阳性（n = 14） 阴性（n = 9）
哌拉西林 25（62.50） 7（41.18） 10（71.43） 8（89.89） 0.051
哌拉西林/他唑巴坦 25（62.50） 6（35.29） 9（64.29） 1（11.11） 0.046
头孢他啶 25（62.50） 7（41.18） 10（71.43） 8（89.89） 0.051
头孢哌酮 38（95.00） 15（88.23） 14（100.00） 9（100.00） 0.499
头孢哌酮/舒巴坦 25（62.50） 4（23.53） 8（57.14） 5（55.56） 0.135
亚胺培南 24（60.00） 7（41.18） 10（71.43） 7（77.78） 0.132
美罗培南 24（60.00） 7（41.18） 10（71.43） 6（66.67） 0.230
阿米卡星 25（62.50） 4（23.53） 6（42.88） 5（55.56） 0.284
左氧氟沙星 25（62.50） 6（35.29） 10（71.43） 7（77.78） 0.060
多西环素 25（62.50） 7（41.18） 10（71.43） 8（89.89） 0.051
替加环素 0（0.00） 0（0.00） 0（0.00） 0（0.00） —
多黏菌素 0（0.00） 0（0.00） 0（0.00） 0（0.00） —
复方磺胺甲恶唑 24（60.00） 7（41.18） 10（71.43） 7（77.78） 0.132
表3 不同生物被膜形成能力的相关基因检出率[例（%）]
基因 强阳性（n = 17） 弱阳性（n = 14） 阴性（n = 9） 合计 P值
abaI          
  阳性 14（82.35） 11（78.57） 9（100.00） 34（85.00） 0.455
  阴性 3（17.65） 3（21.43） 0（0.00） 6（15.00）
bap          
  阳性 7（41.18） 11（78.57） 7（77.78） 25（62.50） 0.058
  阴性 10（58.82） 3（21.43） 2（22.22） 15（37.50）
BLP1          
  阳性 1（5.88） 1（7.14） 0（0.00） 2（5.00） 1.000
  阴性 16（94.12） 13（92.86） 9（100.00） 38（95.00）
BLP2          
  阳性 6（35.29） 1（7.14） 0（0.00） 7（17.50） 0.039
  阴性 11（64.71） 13（92.86） 9（100.00） 33（82.50）
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